流式细胞仪使用方法

　　流式细胞仪(Flow cytometer)是对细胞进行自动分析和分选的装置。它可以快速测量、存贮、显示悬浮在液体中的分散细胞的一系列重要的生物物理、生物化学方面的特征参量并可以根据预选的参量范围把指定的细胞亚群从中分选出来。多数流式细胞计是一种零分辨率的仪器，它只能测量一个细胞的诸如总核酸量，总蛋白量等指标，而不能鉴别和测出某一特定部位的核酸或蛋白的多少。也就是说，它的细节 分辨率为零。

　　一.开机程序

　　1.检查稳压器电源，打开电源，稳定5分钟。

　　2.打开储液箱，倒掉废液,

　　并在废液桶中加入400ml漂白水原液。打开压力阀，取出鞘液桶，将鞘液桶加至4/5满(一般可用三蒸水，做分选必须用PBS或FACSFlow)，合上压力阀。确实盖紧桶盖，检查所有管路是否妥善安置。

　　3.将FACSCalibur开关打开，此时仪器功能控制钮的显示应是STANDBY，预热5-10分钟。排出过滤器内的气泡。

　　4.如果需要打印，打开打印机电源。

　　5.打开电脑,等待屏幕显示出标准的苹果标志。

　　6.执行仪器PRIME功能一次，以排除Flow cell中的气泡。

　　7.分析样品时，先用FACA Flow 或PBS进行HIGH RUN约2分钟。

　　做过分选后，每次开机后需冲洗管道：向分选装置上装上两个50ml离心管，不接通浓缩系统，摁下右下角白色按钮开始冲洗。待自动停止

　　后接通浓缩装置，同上法冲洗一次。

　　二.预设获取模式文件(Acquisition Template Files)

　　1.从苹果标志中选择CELLQuest见一个新视窗，可利用此视窗编辑一个获取模式文件。

　　2.选取屏幕左列绘图工具中的Dot plot，绘出一个或多个Dot Plots(点图)。从Dot Plot对话框中选取Acquisition作为图形资料来源，并确定适当的x轴和y轴参数。

　　3.选取屏幕左列绘图工具中的Histogram，同上法可绘出Histogram(直方图)。

　　4.将此视窗命名后储存于FACStation G3\BD Applications \CELLQuest Folder \EXP文件夹中，下次进行相同实验时可直接调用。

　　※本计算机中已设定两个模式文件：ACQ和EXP，储存于FACStation G3\BD Applications \CELLQuest \EXP文件夹中，ACQ用于细胞DNA检测，EXP用于细胞表面标志分析。

　　三.用CELLQuest进行仪器的设定和调整

　　1.从苹果画面中选取CELLQuest，进入CELLQuest后在File指令栏中打开合适的获取模式文件。

　　2.从屏幕上方Acquire指令栏中，选取Connect to Cytometer(快捷键： +B)进行电脑和仪器的连机。将出现的Acquisiton Control对话框移至合适位置。

　　3.从Cytometer指令栏中，开启Detectors/Amps、Threshold、Compensation、Status等四个对话框，并将它们移至屏幕右方，以便获取数据时随时调整获取条件。也可以用 +1，2，3，4获得此四个对话框。

　　4.在Detectors/Amps对话框中，先为每个参数选择适当的倍增模式(amplifier mode)：线性模式Lin或对数模式Log。一般进行细胞表面抗原分析如分析外周血的淋巴细胞亚群时，FSC和SSC多以线性模式Lin测量，且DDM Param选择FL2，而FL1, FL2与FL3则以对数模式Log测量;分析细胞DNA含量时，FSC，SSC，FL1，FL2，FL3皆以Lin进行测量，且DDM Param选择FL2;分析血小板表型时，FSC，SSC，FL1，FL2，FL3等均以Log进行测量。

　　5.放上待检测的样品，将流式细胞仪设定于RUN，流速可在HIGH 或LOW上。

　　6.在Acquisiton 3 Control对话框中，选取Acquire，开始获取细胞。在以下的仪器调整过程中随时选取Pause，Restart以观察调整效果。未完全调整好之前不要去掉SETUP前的“

　　7.在Detectors/Amps对话框中，调整FSC和SSC探测器中的信号倍增度：PMT voltages(粗调)与Amp Gains(细调)，使样品信号出现在FSC-SSC点图内,且三群细胞合理分布。

　　8.在Threshold 对话框中选择适当的参数设定Threshold，并调整Threshold的高低，以减少噪音信号(细胞碎片)。一般做细胞表型时用FSC-H而做DNA时用FL2-H。Threshold并不影响检测器对信号的获取，但可改善画面质量。

　　9.从屏幕左列绘图工具中选取Region(区域)，并在靶细胞周围设定区域线，即通常所说的门。圈定合适的细胞群可使仪器调整更为容易。

　　10.Detectors/Amps对话框中，调整荧光检测器(FL1, FL2, FL3, FL4等)的倍增程度。根据所用的荧光阴性对照样品调整细胞群，使之分布在正确的区域内。

　　11.在Compensation对话框中，根据所用的调补偿用标准荧光样品调整双色(或多色)荧光染色所需的荧光补偿。比如，应该为FL¹⁺FL^2-的细胞群却分布在FL¹⁺ FL²⁺区域内，则需调大FL^2-，?%FL1中的“?”并从FL1-FL2点图中观察新的调整是否恰当

　　12.在Status对话框中可见：Laser Power:正常值—Run/Ready为14.7mW，Standby为5mW;Laser current:正常值为6Amps左右。

　　13.调整好的仪器设定可在Instrument Settings对话框中储存，下次进行相同实验时可调出使用，届时只需微调即可。

　　※本计算机中已有三个名叫储存于FAC Station G3/BD Applications/CELL Quest Folder/IMM-InstrSettings及FAC Station G3/BD Files/Instrument Settings Files/CalibFile和Mast-Cell-Set的参数文件，前二者可用于分析人白细胞，后者用于分析小鼠肥大细胞。

　　四.通过预设的获取模式文件进行样品分析：

　　1.从苹果标志中选择CELLQUEST，新视窗出现后从File指令栏中选择Open，打开预设的获取模式文件。

　　2.从屏幕上方Acquire指令栏中，选取Connect to Cytometer进行电脑和仪器的连机。将出现的Acquisiton

　　Control对话框移至合适位置。

　　3.从Cytometer指令栏中选取Instrument Settings，在其对话框中选择Open以调出以前存储的相同实验的仪器设定，按Set 确定。

　　4.在Acquire指令栏中，选择Acquisition & Storage决定储存的细胞数，参数，信号道数。其中Resolution在做细胞表面标志时选择256，做DNA时选择1024。Parameter

　　Saved…则根据不同的检测对象选择不同的参数。

　　5.在Acquire指令栏中，选择Parameter Description，以决定文件存储位置(folder)，文件名称(file)，样品代号以及各种参数的标记(panel)，即安排tube1，2，3…的检测参数。一般本仪器获取的数据按照检测对象的不同分别储存于FACStation G3/BD Applications/CELLQuest/IMM 和DNA 文件夹中。文件根据日期命名。

　　6.在Cytometer指令栏中，选择Counters，将此对话框移至合适位置，以便于随时观察events计数。

　　7.将样品试管放至检测区，在Acquire Control对话框中选取Acquire以启动样品分析测定。

　　8.微调仪器设定，待细胞群分布合适后选择Acquire Control对话框中Pause，Abort，开始正式获取信号，存储数据。

　　9.当一定数目的细胞被测定后，获取会自动停止，并会自动存储数据。重复步骤7，继续分析下一个样品，直到所有的样品数据分析完毕。当所有样品分析分析完毕，即，换上三蒸水，并将流式细胞仪置于“STANDBY”状态，以保护激光管。

　　五.关机程序：

　　1.从File中选择Quit，退出软件，选择Don’t Save至苹果屏幕。

　　2.用4mL，1：10稀释的漂白水作样品，将样品置于旁位(vacuum is on)，以外管吸去约2mL，在将样品架置于中位(vacuum is off)，再HIGH RUN 5分钟(内管吸去2mL)。

　　3.改用三蒸水4mL作样品，同上处理。

　　4.按Prime三次。

　　5.此时仪器自动转为STAND-BY状态，换2mL三蒸水。必须在仪器处于“STANDBY”状态 ，10分钟后再依次关掉计算机、打印机、主机、稳压电源，以延长激光管寿命，并确保应用软件的正常运行。

　　6.填写使用登记表。

来源：实验与分析